Control biológico de culícidos de importancia médica: Investigaciones del Instituto de Medicina Tropical “Pedro Kourí”
Palabras clave:
control biológico; culícidos; mosquitos; peces; nematodos; copépodos; Bacillus thuringiensis; Lysinibacillus sphaericus.Resumen
Introducción: La necesidad crítica de disponer de herramientas seguras y efectivas para el control de culícidos, como alternativas a los insecticidas químicos, estimula considerablemente el interés por el empleo del control biológico. En Cuba, las investigaciones sobre control biológico aplicado al manejo de mosquitos de importancia médica, se realizaron mediante diferentes estudios de laboratorio y campo, liderados por el Instituto de Medicina Tropical “Pedro Kourí”, con el propósito de evaluar la eficacia de insectos acuáticos y peces, así como de promover el uso de nemátodos y bacterias esporógenas en la regulación de diferentes especies de culícidos.
Objetivo: Recopilar los principales resultados de investigaciones desarrolladas por el grupo Control Biológico de Vectores del Instituto de Medicina Tropical “Pedro Kouri”.
Métodos: Se realizó una revisión documental digital (Biblioteca Cochrane, EBSCO, Google Scholar, Hinari, PubMed, Scopus y SciELO) e impresa de: artículos científicos, dictámenes de resultados relevantes, informes técnicos, tesis de doctorado, maestrías y licenciatura; correspondientes al período comprendido entre 1985 y 2023.
Conclusiones: Las investigaciones encaminadas al control biológico de vectores de importancia médica ofrecieron evidencias para el desarrollo, la implementación y la generalización de este tipo de control en Cuba. Los estudios desarrollados en el periodo analizado garantizaron que el Programa Nacional de Vigilancia y Lucha Antivectorial de Cuba contara con métodos alternativos, ecológicos y seguros.
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Citas
1. ONU. World population prospects: the 2012 revision. New York: United Nations: Department of Economic and Social Affairs, Population Division; 2013 [acceso 22/06/2022]. Disponible en: https://population.un.org/wpp/publications/Files/WPP2012_Volume-I_Comprehensive-Tables.pdf
2. Espinal MA, Andrus JK, Jauregui B, Waterman SH, Morens DM, Santos JI, et al. Emerging and Reemerging Aedes-Transmitted Arbovirus Infections in the Region of the Americas: Implications for Health Policy. Am J Public Health. 2019;109(3):387-92. DOI: https://doi.org/10.2105/AJPH.2018.304849
3. WHO. Global vector control response 2017-2030. Resolution WHA7016: An integrated approach for the control of vector-borne diseases. Geneva: World Health Organization; 2017 [acceso 22/07/2021]. Disponible en: https://www.who.int/publications-detail-redirect/9789241512978
4. WHO. Integrating neglected tropical diseases into global health and development: fourth WHO report on neglected tropical diseases. Geneva: World Health Organization; 2017 [acceso 10/06/2021] Disponible en: https://www.who.int/publications/i/item/9789241565448
5. Badii M, Flores A, Wong L. Fundamentos y perspectivas de control biológico. México: Universidad Autónoma de Nuevo León, 2000.
6. Coulson J, Klaasen W, Cook R, King E, Chiang H, Hagen K, et al. Notes on biological control of pests in China, 1979. In: USDA Off of Intern. Coop. & Development CP, editor. Biological Control of Pests in China. Washington, DC1982. p. 266.
7. Bisset Lazcano JA, Marquetti Fernández MC, Montada Dorta D, Hernández Contreras N, Leyva Silva M, Fuentes González O, et al. Aportes científicos del Instituto de Medicina Tropical “Pedro Kouri” a la vigilancia de Aedes aegypti (Díptera: Culicidae) en Cuba, 1982-2020. Rev Cubana Med Trop. 2021[acceso 10/12/2025];73(3):1-18 Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602021000300015
8. Santamarina M, González R. Control biológico de larvas de mosquitos mediante coleópteros acuáticos en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 1985;37(3):354-8.
9. García I, González R. Principales especies de peces larvorívoros en la familia Poecilidae y su efectividad en condiciones naturales de Cuba. Rev Cub de Med Trop. 1986;38(2):197-202.
10. Montero G, Espino R, García I, Díaz M. Efectividad del Bacillus thuringiensis variedad israelensis sh-14 en criaderos de Anopheles albimanus Wiedemann en las condiciones naturales en Cuba. Rev Cubana Hig Epidemiol. 1986 [acceso 12/04/2025];24(2):165-71. Disponible en: https://hdl.handle.net/20.500.14330/PER01000085815
11. Koldenkova L, García Ávila I, Alonso Navarro N, García García I. Aspectos de la reproducción del pez larvivoro Poecilia reticulata (Poeciliidae) en condiciones naturales. Rev Cubana Med Trop. 1990;42(1):140-2.
12. Montero LG, Díaz Pérez M, Marrero Figueroa A, Castillo González FA. Resultados de las aplicaciones en pilotaje del biolarvicida Bacillus sphaericus 2362 en criaderos de mosquitos del municipio Santa Cruz del Norte (provincia La Habana) Rev Cubana Med Trop. 1991;43(1):39-44.
13. Santamarina MA, Perez, R. Reduction of Mosquito Larval Densities in Natural Sites After Introduction of Romanomermis culicivorax (Nematoda: Mermithidae) in Cuba. J Med Entomol. 1997;34(1):1-4. DOI: https://doi.org/10.1093/jmedent/34.1.1
14. Benelli G, Jeffries CL, Walker T. Biological Control of Mosquito Vectors: Past, Present, and Future. Insects. 2016;7(4):52. DOI: https://doi.org/10.3390/insects7040052
15. Hernández Contreras N, Rivalta González V, García Ávila I, Camacho A. Marcadores genéticos bioquímicos en el estudio del pez larvívoro Cubanichthys cubensis (Eigenmann,1903) (Teleostei:Cyprynodontidae) utilizado como agente biorregulador de culícidos en Cuba. Rev Cubana Med Trop. 1991;43(1):53-7.
16. Koldenkova L, García Ávila I. Estudio de la fecundidad del pez larvivoro Rivulus cylindraceus, Poey 1860 (Cyprodontiformes: Cyprodontidae), agente biorregulador de culícidos en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 1991;43(1):59-65.
17. Koldenkova L, García Ávila GI, García García I. Actividad biorreguladora del pez larvívoro Poecilia reticulata, Poep. 1860 en un criadero natural de Culex quinquefasciatus. Rev. Cubana Ciencias Vet. 1990 [acceso 12/03/2024];21(1):71-80. Disponible en: https://hdl.handle.net/20.500.14330/PER01000110142
18. Koldenkova L, García Ávila GI, J GF, González Broche R. Capacidad depredadora del pez larvívoro Poecilia reticulata (Peters, 1895) (Cyprinodontiformes: Poecillidae) en un criadero natural de mosquito Culex quinquefasciatus, 1823. Rev Cubana Med Trop. 1988;40(1):21-6.
19. Garcés Fonseca J, González Broche R, Koldenkova L, Santamarina Mijares A. Capacidad depredadora de Gambusia punticulata, Poey. 1855 (Cyprinodontiformes: Poeciliidae) sobre larvas de Aedes taeniorhynchus Wiedemann, 1821 (Diptera: Culicidae) en condiciones naturales. Rev Cubana Med Trop. 1988;40(3):122-33.
20. García Ávila I, Koldenkova L, González Mustelier JC. Cyprinodon variegatus (Cyprinodontiformes: Cyprinodontidae), bio-regulator of mosquito larvae of Aedes taeniorhynchus and Culex bahamensis in the isle of youth, Cuba. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1992;87(3):461. DOI: https://doi.org/10.1590/S0074-02761992000300025
21. Koldenkova L, García Ávila I. Desarrollo embrionario de Rivulus cylindraceus (Cyprinodontiformes: Cyprinodontidae): agente biorregulador de culicidos. Rev Cubana Med Trop. 1991;43(2):110-8.
22. Koldenkova L, García Ávila I. Capacidad de los huevos del pez larvivoro Rivulus cylindraceus, Poey 1860, de resistir la desecación. Posible utilización como biorregulador de larvas de mosquitos en reservorios temporarios. Rev Cubana Med Trop. 1994;46(1):25-7.
23. Hernández Contreras N, Díaz Pérez M, Mendiola Martínez J, Báez Artelles JA, García Ávila I. Ingestión de larvas de Culex quinquefasciatus (Diptera: Culicidae) por Girardinus metallicus (Cyprinodontiformes: Poecilidae). Rev Cubana Med Trop. 2004 [acceso 10/12/2025];56:152-5. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602004000200013&lng=en.
24. Hernández Contreras N, Fimia Duarte R, Rojas Urdaneta JE, García Ávila GI. Metodología para valorar el potencial y la capacidad depredadora de los peces larvívoros mediante observaciones directas en el laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 2005 [acceso 10/12/2025];57:156-8. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602005000200012&lng=en.
25. Fernández-Calienes A, Hernández N, Fraga J. Amplificación al azar del ADN de 5 poblaciones cubanas de peces larvívoros del género Rivulus. Rev Cubana Med Trop. 2003 [acceso 10/12/2025];55:203-8. Disponible en: http://scielo.sld.cu/pdf/mtr/v55n3/mtr12303.pdf
26. Doadrio I, Perea S, Alcaraz L, Hernandez N. Molecular phylogeny and biogeography of the Cuban genus Girardinus Poey, 1854 and relationships within the tribe Girardinini (Actinopterygii, Poeciliidae). Molecular phylogenetics and evolution. 2009;50(1):16-30. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ympev.2008.09.014
27. García Ávila I, Vivar Guzmán R, Quezada Márquez J, Huamán Mayta P. Insectos acuáticos biorreguladores de larvas de mosquito presentes en los "Pantanos de Villa", Lima, Perú. Rev Cubana Med Trop. 1996;48:227-8.
28. Santamarina Mijares A, García Avila I, Rivera Rosales J, Solís Montero A. Release of Romanomermis iyengari (Nematoda: Mermithidae) to control Aedes taeniorhynchus (Diptera: Culicidae) in Punta del Este, Isla de la Juventud, Cuba. J Med Entomol. 1996;33(4):680-2. DOI: https://doi.org/10.1093/jmedent/33.4.680
29. Rodríguez J, García García I, Díaz M, García Ávila I, Sánchez JE. Efecto patogénico del nemátodo parásito Strelkovimermis spiculatus en larvas del mosquito Culex quinquefasciatus en condiciones de laboratorio en Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2003 [acceso 10/12/2025];55:124-5. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602003000200013&lng=en
30. Rodríguez Rodríguez J, García García I, Menéndez Z, García Avila I, Eladio Sánchez J, Pérez Pacheco R. Pathogenic effect of 3 parasitic nematodes in Aedes aegypti larvae under laboratory conditions in Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2005 [acceso 10/12/2025];57(3):219-22. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602005000300011&lng=en.
31. Rivera Mendoza P, Blanco J, Solís Quant S, Eliseo Astin G, García Ávila I, García García I, et al. Romanomermis culicivorax (Nematoda:Mermithidae): una alternativa para el control de vectores de malaria en Nicaragua. Rev Cubana Med Trop. 2014 [acceso 10/12/2025];66:101-11. Disponible en: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/10
32. García García I, Menéndez Díaz Z, Hernández Contreras N, García Ávila I, Anaya Martínez J, Companioni Ibáñez A, et al. Susceptibilidad de larvas de Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) a Strelkovimermis spiculatus (Nematoda: Mermithidae) en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 2014 [acceso 10/12/2025];66:453-7. Disponible en: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/57
33. Menéndez Díaz Z, García García I, Hernández Contreras N, González Rizo A, Companioni Ibáñez A, Berovides Álvarez V. Susceptibilidad de diferentes estadios larvarios de Aedes albopictus (S) (Diptera: Culicidae) a la infección por dos especies de nemátodos mermítidos en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 2018 [acceso 10/12/2025];70:83-91. Disponible en: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/377
34. Menéndez Díaz Z, Suárez Delgado S, Rodríguez Rodríguez J, García Ávila I, Díaz Pérez M, García García I. Evaluación de Macrocyclops albidus (J.) para el control larval de Aedes aegypti (L.) bajo condiciones de laboratorio en Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2004 [acceso 10/12/2025];56:227-9. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602004000300013&lng=en.
35. Rey JR, O'Connell S, Suárez S, Menéndez Z, Lounibos LP, Byer G. Laboratory and field studies of Macrocyclops albidus (Crustacea: Copepoda) for biological control of mosquitoes in artificial containers in a subtropical environment. J Vector Ecol. 2004 [acceso 10/12/2025];29(1):124-34. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15266749/
36. Suárez Delgado S, Rodríguez Rodríguez J, Menéndez Díaz Z, Montada Dorta D, García Ávila I, Marquetti Fernández MdC. Macrocyclops albidus (Copepoda: Cyclopidae): una nueva alternativa para el control de larvas de mosquitos en Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2005 [acceso 10/12/2025];57. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602005000300008&lng=es.
37. Menéndez Díaz Z, Reid JW, Guerra IC, Ramos IV. A new record of Mesocyclops pehpeiensis (Copepoda: Cyclopoida) for Cuba. J Vector Ecol. 2006;31(1):193-5. DOI: https://doi.org/10.3376/1081-1710(2006)31[193:ANROMP]2.0.CO;2
38. Menéndez Z, Reid JW, Fimia R. New records of species of the genus Mesocyclops (copepoda, cyclopoida) from Cuba. Crustaceana. 2007 [acceso 10/05/2024];80(9):1025-31. Disponible en: http://www.jstor.org/stable/20107893
39. Marten GG. A survey of cyclopoid copepods for control of Aedes albopictus larvae. Bull Soc Vector Ecol. 1989;14:232-6.
40. Lardeux FJR. Biological control of Culicidae with the copepod Mesocyclops aspericornis and larvivorous fish (Poeciliidae) in a village of French Polynesia. Med. Vet. Entomol. 1992;6:9-15.
41. Rojas JE, Mazzarri M, Sojo M, García-A GY. Evaluación de la efectividad de Bacillus sphaericus cepa 2362 sobre larvas de Anopheles nuñeztovari. Mérida, Venezuela. Invest Clin. 2001 [acceso 10/04/2023];42(2):131-46. Disponible en: http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0535-51332001000200005&lng=es
42. Rodríguez Rodríguez J, Menéndez Díaz Z, García García I, Díaz Pérez M, Sánchez JE, Gato Armas R. Conducta de oviposición de Aedes aegypti (L.) en presencia de Macrocyclops albidus (J.) y Bacillus thuringiensis var. israelensis en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 2007 [acceso 10/12/2025];59(1):73-5. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602007000100016&lng=en.
43. Corbillon CO, Gonzalez A, Menendez Z, Companioni A, Bruzon RY, Diaz M, et al. Influencia de factores bióticos sobre la eficacia de Bacillus thuringiensis var.israelensis contra Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). Rev Cubana Med Trop. 2012 [acceso 10/12/2025];64(3):235-43 Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602012000300004&lng=en.
44. Gato R, Díaz M, Bruzón RY, Menéndez Z, González A, Hernández Y, et al. Estudio de resistencia de Aedes aegypti a Bacillus thuringiensis var. israelensis. Rev Cubana Med Trop. 2008 [acceso 10/12/2025];60(1):74-7. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602008000100011&lng=en.
45. Menéndez Z, Rodríguez J, Gato R, Companioni A, Díaz M, Bruzón RY. Susceptibility of Aedes aegypti (L.) strains from Havana to a Bacillus thuringiensis var. israelensis. Rev Cubana Med Trop. 2012 [acceso 10/12/2025];64(3):324-9. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602012000300012&lng=en.
46. Harwood JF, Farooq M, Turnwall BT, Richardson AG. Evaluating Liquid and Granular Bacillus thuringiensis var. israelensis Broadcast Applications for Controlling Vectors of Dengue and Chikungunya Viruses in Artificial Containers and Tree Holes. J Med Entomol. 2015;52(4):663-71. DOI: https://doi.org/10.1093/jme/tjv043
47. Uragayala S, Kamaraju R, Tiwari S, Ghosh SK, Valecha N. Field testing & evaluation of the efficacy & duration of effectiveness of a biolarvicide, Bactivec(®) SC (Bacillus thuringiensis var. israelensis SH-14) in Bengaluru, India. Indian J Med Res. 2018;147(3):299-307. DOI: https://doi.org/10.4103/ijmr.IJMR_1631_16
48. Almeida J, Mohanty A, Kerkar S, Hoti S, Kumar A. Current status and future prospects of bacilli-based vector control. Asian Pac. J. Trop. Med. 2020;13(12):525-34. DOI: https://doi.org/10.4103/1995-7645.296720
49. González Rizo A. Aislamientos nativos de Bacillus thuringiensis (Berliner, 1911) (Bacillales: Bacillaceae) con actividad larvicida contra Aedes aegypti (Linnaeus, 1762) (Diptera: Culicidae). Tesis en opción al grado científico de Doctor en Ciencias de la Salud.Instituto de Medicina Tropical “Pedro Kourí”. La Habana, Cuba. 2021. Disponible en: http://tesis.sld.cu/index.php?P=FullRecord&ID=754
50. González A, Díaz R, Díaz Ma, Borrero Y, Bruzón RY, Carreras B, et al. Characterization of Bacillus thuringiensis soil isolates from Cuba, with insecticidal activity against mosquitoes. Rev. Biol. Trop. 2011 [acceso 10/05/2024];59(3):1007-16. Disponible en: http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0034-77442011000300004&lng=en
51. González Rizo A, Rodríguez G, Bruzón RY, Díaz M, Companionis A, Menéndez Z, et al. Isolation and characterization of entomopathogenic bacteria from soil samples from the western region of Cuba. J Vector Ecol. 2013;38(1):46-52. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1948-7134.2013.12007.x
52. González-Rizo A, Castañet CE, Companioni A, Menéndez Z, Hernández H, Magdalena-Rodríguez M, et al. Effect of Chlorine and Temperature on Larvicidal Activity of Cuban Bacillus thuringiensis Isolates. J Arthropod Borne Dis. 2019 [acceso 25/03/2025];13(1):39-49. Disponible en: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6643015/
53. González Rizo A, Castañet Martínez C, Cardentey Ramírez C, Companioni Ibáñez A, Menéndez Díaz Z, Monzote Fidalgo L, et al. Evaluation of Cuban Bacillus thuringiensis (Berliner, 1911) (Bacillales: Bacillacea) isolates with larvicidal activity against Aedes aegypti (Linnaeus, 1762) (Diptera: Culicidae). Asian Pac J Trop Med. 2022;15(2):79-86. DOI: https://doi.org/10.4103/1995-7645.338446
54. Liu X, Ruan L, Peng D, Li L, Sun M, Yu Z. Thuringiensin: A Thermostable Secondary Metabolite from Bacillus thuringiensis with Insecticidal Activity against a Wide Range of Insects. Toxins 2014;6:2229-38. DOI: https://doi.org/10.3390/toxins6082229
55. Sánchez-Soto AI, Saavedra-González GI, Ibarra JE, Salcedo-Hernández R, Barboza-Corona JE, Del Rincón-Castro MC. Detection of β-exotoxin synthesis in Bacillus thuringiensis using an easy bioassay with the nematode Caenorhabditis elegans. Lett Appl Microbiol. 2015;61(6):562-7. DOI: https://doi.org/10.1111/lam.12493
56. González Rizo A, Menéndez Díaz Z, García García I, Anaya Martínez J, González Broche R, Calderón Camacho IR, et al. Detección de beta-exotoxinas en aislamientos de Bacillus thuringiensis nativos de Cuba. Rev Cubana Med Trop. 2016 [acceso 10/12/2025];68. Disponible en: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/131
57. González Rizo A, Torres Cueto AE, Companioni Ibáñez A, Cantillo Padrón JD, García García I, Anaya Martínez J, et al. Bacillus thuringiensis A21, un aislado no tóxico de elevada actividad larvicida residual contra Aedes aegypti. Rev Cubana Med Trop. 2022 [acceso 10/12/2025];74. Disponible en: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/803
58. González Rizo A, Companioni Ibáñez A, Menéndez Díaz Z, Anaya Martínez J, García García I, Lorenzo Borjas CM, et al. Evaluación de la eficacia larvicida de Rapidall NP3 (Bacillus thuringiensis) contra Aedes aegypti (Linnaeus) (Diptera: Culicidae) en condiciones de laboratorio. Rev Cubana Med Trop. 2019 [acceso 10/12/2025];71(1):e355. Disponible en: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/355
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