Physiological parameters of the animal model Rattus norvegicus var. albinus in an experimental infection by isolates of Giardia lamblia

Authors

Keywords:

physiological parameter, experimental infection, giardiosis

Abstract

Introduction: The measurement parameters of a physiological nature in animal models against an experimental infection; They are necessary as descriptors that help a correct comparative evaluation in the face of an infectious pathology.

Objective: To determine the physiological parameters of the Rattus norvegicus var. albinus in the face of an experimental infection by isolates of Giardia lamblia.

Methods: Presenting an experimental design to be applied to a sample of 10 rats where an acclimatization phase and an infection induction phase and study of its expression in physiological parameters were developed, which were standardized; the norms of care and animal welfare that bioethics demands were taken into account.

Results: The physiological parameters of the animal model Rattus norvegicus var. albinus evaluated against an experimental infection by isolates of Giardia lamblia were the Body Mass Index with a value of 0.377 g/cm2 that was reduced to 0.32 g/cm2, the weight of 255 g that was reduced to 200 gr; The coproparasitological examination showed the presence of trophozoites (0-5059 trophozoites/30 days of feces collection) and cysts (0-2293 cysts/15 days of feces collection) and was also evaluated histopathologically, demonstrating a higher frequency of trophozoites in the duodenum and cysts in the distal ileum.

Conclusions: The physiological parameters in the rat related to the body mass index are altered, decreasing, and changes are also evident at the histopathological and coproparasitological level during the experimental Giardia infection.

Downloads

Download data is not yet available.

Author Biography

Juan Luis Rodríguez Vega, Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo. Facultad de Ciencias Biológicas. Lambayeque, Perú.

Docente universitario e investigador con grado de Doctor en Ciencias - UNPRG, maestría en Investigación UNPRG, Fisiología y Biofísica UNT, Psicología Clínica USS, candidato a doctor en Ciencias Biomédicas por la UNT, y candidato a Post Doctorado en Filosofía e Investigación con línea en Filosofía de la ciencia - Beca SAM - UNEY, estudiante de Maestría en Farmacología - UNT con estudios de Educación, Biología, Psicología y Medicina;Docente Principal T.P. en algunas de las universidades de la región con 18 años de ejercicio docente en este nivel. Ha ocupado Jefaturas de Laboratorio en Docencia en el Colegio Nacional de San José de Chiclayo por mas de 22 años, y en Microbiología de Alimentos (Molino San Miguel por 6 años); asesor y consultor en Investigación Científica; con especialización clínica en el Hospital Regional Lambayeque; ejerciendo consultoría externa en sus especialidades. Presenta línea de investigación en Neurofisiología con énfasis en psicofisiología del aprendizaje y Etnofarmacología así como Psicología transpersonal con énfasis en manejo de enteógenos; Administrativamente tiene experiencia como Director de escuela; Jefe de la Unidad de Investigación en Ciencias de Ingeniería y Miembro del Comité de ética en Investigación. Es asesor de Tesis en Pre y Post Grado. Responsable de la Academia Peruana de la Salud - Región Lambayeque. Miembro de la Sociedad Peruana de Inmunología. Miembro de la Sociedad Peruana de Botánica. Miembro de la Sociedad Peruana de Farmacología y Terapéutica Experimental, Miembro de la Asociación Peruana de Parasitólogos, Miembro Titular de la Sociedad Peruana de Medicina Alternativa y Complementaria; miembro titular de la Sociedad Peruana de Neurociencias - Capitulo Perú de la Society for Neuroscience, miembro de la Sociedad Mexicana de Ciencias Fisiológicas y miembro de la Asociación Peruana de Neuropsicología, Miembro de la Sociedad Española de Ciencia Fisiológica

References

1. Möller R, Vázquez N, Teliz D, Méndez V. Peritoneo del aparato digestivo de la rata Wistar (Rattus norvegicus). Int J Morphol. 2013 [acceso 20/07/2023];31(1):128-30. Disponible en: https://www.researchgate.net/publication/260774460_Peritoneo_del_Aparato_Digestivo_de_la_Rata_Wistar_Rattus_norvegicus

2. Ministerio de salud. Helmintos intestinales en el Perú: análisis de la prevalencia (1981-2001). Lima: Oficina General de Epidemiología; 2003.

3. Lima C, Lima A, Dória M, Azevedo G, Russo M, Cavalcante R, et al. Valores de referencia hematológicos e bioquímicos de ratos (Rattus norvegicus linhagem Wistar) provenientes do bioterio da Universidade Tiradentes. Cientia Plena. 2014 [acceso 20/07/2023];10(7). Disponible en: https://scientiap

4. La Torre Villalba LP. Evaluación del efecto antiinflamatorio de Zingiber officinale Roscoe (jengibre) en animales de experimentación [Tesis de Grado]. UCSM. Arequipa (Perú); 2014.

5. Xiao L. Giardia infection in farm animals. Parasitol Today. 1994;10(10):436-8.

6. Xiao L, Herd RP, McClure KE. Periparturient rise in the excretion of Giardia sp. cysts and Cryptosporidium parvum oocysts as a source of infection for lambs J Parasitol. 1994 Feb;80(1):55-9.

7. Wolfe MS. Giardia and giardiasis. New York (NY): Plenum; 1984.

8. Wisnivesky C. Ecología y epidemiologia de las infecciones parasitarias. Costa Rica: Editorial Tecnológica de Costa Rica; 2003.

9. Wilber R, Zenia B, Marisel D, Ana R, María G, Marta R, et al. El 1,2,3 de la experimentación con animales de laboratorio. Scielo Perú. 2016 [acceso 20/07/2023];14(2):1-2. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1726-46342016000200015

10. Vega Gutiérrez ML, Alfaro González M, Triguez García M, Calvo Romero C. Giardiasis resistente a metronidazol: a propósito de un caso. Rev Pediatr Aten Primaria. 2008;10:261-6.

11. Vargas Mamani JJ. Parámetros bioquímicos y sanguíneos de la rata de laboratorio (Rattus norvegicus): revisión de la literatura. Rev Med Basadrina. 2020;14(1):52-5. DOI: https://doi.org/10.33326/26176068.2020.1.927

12. Vargas B, Miranda D, García A, Navarro M, Maldonado A, Trejo A, et al. Manejo de animales del bioterio de la UAM-Iztapalapa. México: División de ciencias biológicas y de la salud; 2018 [acceso 20/07/2023]. Disponible en: http://publicacionescbs.izt.uam.mx/DOCS/BIOTERIO.pdf

13. Udezulu IA, Visvesvara GS, Moss DM, Leitch GJ. Isolation of two Giardia lamblia (WB strain) clones with distinct surface protein and antigenic profiles and differing infectivity and virulence. Infect Immun. 1992 Nov;60(11): 2274-80.

14. Torrez D, Pérez N, Bozzt M, Menidola J, Hernández H. Sensibilidad de Giardia lamblia a extractos de Artemisia absintkium y Artemisia vulgaris in vitro. Rev Cubana Med Trop. 2001;45:S170-2.

15. Torrez D, Holland I, Palacio E. Efecto de un extracto alcohólico de propóleos sobre el crecimiento de Giardia lamblia in Vitro. Rev Cubana Cienc Vet. 1990;21:15-21.

16. Falcón P, Zabaleta V. Metodología de la investigación científica. CEPEUNT. Universidad Nacional de Trujillo. Trujillo (Perú); 1978

18. Svobodova V, Svobodova M, Konvalinova J. Comparison of the detection of Giardia intestinalis cysts with the presence of specific antibodies in dogs and cats. Vet Med Praha. 1995;40:141-6.

19. Soto V. Bases para la investigación científica y tesis universitaria. Chiclayo, Perú: Colegio Médico del Perú; 1989.

20. Moreno E, Araujo M, Alarcón M, Lugo A, Moreno S, Borges R. Alteraciones hematológicas y de glucosa sanguínea en ratas Wistar con infección chagásica. Venezuela: Investigación Clínica; 2007 [acceso 20/07/2023]. Disponible en: https://www.redalyc.org/pdf/3729/372937667007.pdf.

21. Mead R. The desing of experiments: statitical principles for practical application. Cambridge University Press; 1984. En: Revista Animales de Laboratorio. Sección Técnicas. 2014 [acceso 20/07/2023];(42):31-33. Disponible en: https://www.uib.cat/digitalAssets/303/303729_2014_animaleslaboratorio_num62_31_33.pdf

22. Monteza S, Rentería V. Prevalencia y factores asociados a Giardia lamblia en niños de Chongoyape, mediante la detección de coproantígenos y examen microscópico directo. [Tesis de grado]. Facultad de Ciencias Biológicas. UNPRG. Lambayeque (Perú); 2015.

23. Krinke G. The Laboratory Rat. 1ª ed. Reino Unido: Academic Press; 2000.

24. Johnson M. Ratones y ratas de laboratorio. Synatom Research. New Jersey (USA);2012 [acceso 20/07/2023]. Disponible en: https://www.labome.com/method/Laboratory-Mice-and-Rats.html

25. Ibáñez H, Nicanor J, Jara C, César G, Guerra M, Antenor D, et al. Prevalencia del enteroparasitismo en escolares de comunidades nativas del alto Marañón, Amazonas, Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2004 [acceso 20/07/2023];21(3):153-60. Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=36321303.

26. Becerril FM. Parasitología médica. Barcelona (España): McGraw-Hill Interamericana de España S.L; 2014.

27. Barrón González M, Rodríguez Garza R, Quiñones Gutiérrez Y. Inhibición del crecimiento de Giardia lamblia por acción del extracto acuoso y metanólico de semillas de Curcubita pepo. Rev Iberoamericana para la investigación del Desarrollo Educativo. 2009;(9):1-17.

28. Barassi N, Benavides F, Ceccarelli A. Ética en el uso de animales de experimentación. Buenos Aires: Rev. Medicina (Buenos Aires). 1996;56(1).

29. Atias A. Parasitología Médica. Santiago de Chile (Chile): Publicaciones Técnicas Mediterráneo; 2001.

30. Arévalo A, Duque S, Nicholls RS. Comportamiento de la infección experimental por aislamientos colombianos de Giardia duodenalis en el modelo animal del gerbo (Meriones unguiculatus). Biomédica 1. 2005 [acceso 20/07/2023];25(3):305-14. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120-41572005000300006&lng=en&tlng=es

31. Arcila Quinceno VH, Conde Cotes CA, Nieto Pico JE, Garcia Prada FH. Comparación de los valores de referencia hematológicos en ratas Wistar/UIS (Rattus norvegicus) con parámetros establecidos en laboratorios de altos estándares. Spei domus;2010.

32. Heyworth MF. Relative susceptibility of Giardia muris trophozoites to killing by mouse antibodies of different isotypes. J Parasitol. 1992;78:73-6.

33. Hewlett EL, Andrews JS Jr, Ruffier J, Schaefer FW. Experimental infection of mongrel dogs with Giardia lamblia cysts and cultured trophozoites. J Infect Dis. 1982;145:89-93.

34. Hernández S. El modelo animal en las investigaciones biomédicas. Biomedicina. 2006 [acceso 20/07/2023];(2-3):252-6. Disponible en: http://www.um.edu.uy/docs/revistabiomedicina/2-3/modelo.pdf

35. He Q, Su G, Liu K, Zhang F, Jiang Y, Gao J, et al. Sex-specific reference intervals of hematologic and biochemical analytes in Sprague-Dawley rats using the nonparametric rank percentile method. PLoS One. 2017 [acceso 20/07/2023];12(12). Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC

36. Goñi A, León D, Peña A, Ronda M, González B, Arteaga M, et al. Valores hematológicos y bioquímicos de las ratas Sprague Dawley producidas en CENPALAB. REDVET. 2011;13(6).

37. Gómez-Rodríguez B T, Cortés Suárez S, Izquierdo-Sánchez T. Efecto del extracto hidroalcohólico de Zingiber officinale Roscoe (jengibre) en modelo de hepatotoxicidad en ratas. Rev Cubana Plant Med. La Habana (Cuba); 2013.

38. Gómez D, Sosa I, Gómez E. Eficacia de una combinación de sulfadimidina, trimetroprim y sulfato de atropina (Hefrotrim 120) contra giardiasis en perros. Revista de Salud Animal. Mar. 2009 [acceso 20/07/2023]. Disponible en: http://search.ebscohost.com/login.aspx?direct=true&db=asn&AN=55190518&lang=es&site=eds-live&scope=site

39. Fuentes M, Acosta L, Rodríguez P. Perfil lipídico, proteico y glicemia en ratas Sprague Dawley y Shr/N producidas en la UCLA. Gaceta de Ciencias Veterinarias. 2008[acceso 20/07/2023];13(3). Disponible en: http://www.ucla.edu.ve/dveterin/departamentos/CienciasBasicas/gcv/2530int2530er2530no/articulos/documasp/~vol13num3art3dic08.pdf

40. Fuentes F, Mendoza R, Rosales A, Cisneros R. Guía de manejo y cuidado de animales de laboratorio. Lima (Perú): Instituto Nacional de Salud; 2008 [acceso 20/07/2023]. Disponible en: http://www.ins.gob.pe/insvirtual/images/otrpubs/pdf/GUIA_ANIMALES_RATON.pdf.

41. Fordtran JS, Locklear TW. Ionic constituents and osmolality of gastric and small-intestinal fluids alter eating. Am J Digest Dis. 1966;11:503-21

42. Filho W, Lima C, Ramos M, Silva M, Perilhao M, Caldeira M. Reference database of hematological parameters of growing and aging rats. 2017. DOI: https://doi.org/10.1080/13685538.2017.1350156

43. Fernández J, Heuze Y. El programa interno para el cuidado y uso de los animales de laboratorio en las instituciones biomédicas. México: Bioterio de la Universidad Autónoma Metropolitana; 2007.

44. Faubert GM, Belosevic M. Animals models for Giardia duodenalis type organisms. En: Meyer EA, editor. Human parasitic diseases;3. Giardiasis. Amsterdam: Elsevier Science Publishers Biomedical Division; 1990.

45. Eckmann L, Laurent F, Langford TD, Hetsko ML, Smith JR, Kagnoff MF. Nitric oxide production by human intestinal epithelial cells and competition for arginine as potential determinants of host defense against the lumen-dwelling pathogen Giardia lamblia. J Immunol. 2000;164:1478-87.

46. Delwatta S, Gunatilake M, Baumans VS, Siyani S, Batagoda S, Udagedara A, et al. Reference values for selected hematological, biochemical and physiological parameters of Sprague-Dawley rats. Animal models and experimental medicine. Colombo (Sri Lanka);2018.

47. Craft JC. Experimental infection with Giardia lamblia in rats. J Infect Dis. 1982;145:495-8.

48. Cossio M, Gómez R, Vargas R, Tadeo R, Arruda M. Curvas de referencia para valorar el crecimiento físico de ratas machos Wistar. Scielo; 2013 [acceso 20/07/2023]. Disponible en: http://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0212-16112013000600047

49. Condo MC, Salamanca CE, Ticona JC, Monzón LJ, Flores N, Udaeta E, et al. Evaluación de la susceptibilidad in vitro sobre trofozoítos de Giardia lamblia frente a extractos de plantas de la Medicina Tradicional Tacana. Rev. Cs. Farm. y Bioq; [acceso 20/07/2023];4(1):105-12. Disponible en: https://ojs.ucb.edu.bo/index.php/RCFB/article/view/844.

50. Cardozo C, Osorio A, Martínez CR, Lolas F. El animal como sujeto experimental Aspectos técnicos y éticos. Chile: Centro interdisciplinario de Estudios en Bioética (CIEB); 2007.

51. Buret A, Gall DG, Nation PN, Olson ME. Intestinal protozoa and ephitelial cell kinetics, structure and function. Parasitol Today. 1990;6(11):375-80.

52. Bolant B, Calvo M, Cejalvo B, Gimeno L, Gimeno F, Uoris M. Hematología y bioquímica clínica de la rata Parte 1 y 2. Valencia; 1989. [acceso 20/07/2023]. Disponible en: http://www.oc.lm.ehu.es/Fundamentos/Doctorado/cursos/CirExp/Tecnicas/F043.pdf

Published

2025-12-05

How to Cite

1.
Rodríguez Vega JL, Albino Cornejo GO, Vergara Espinoza MA, Vásquez Del Castillo1 AS, Carrasco Solano FA, Calderón Mundaca WL. Physiological parameters of the animal model Rattus norvegicus var. albinus in an experimental infection by isolates of Giardia lamblia . Rev Cuba Med Tropical [Internet]. 2025 Dec. 5 [cited 2026 Jan. 1];77(1). Available from: https://revmedtropical.sld.cu/index.php/medtropical/article/view/1154

Issue

Section

Artículos originales